سلولهای فیبروبلاست در محیط کشت DMEM حاوی غلظتهای ۵%، ۸%، ۱۰%، ۱۵% و ۲۰% از عصاره پلاکتی مشتق از خونبند ناف همراه با گروه کنترل مثبت که حاوی FBS 10% و کنترل منفی که خالی از هر ۲ (FBS و UCB-PL) بود، کشت شدند و همچنین از گروه (UCB-PL/FBS) که به نسبت مساوی از عصاره پلاکتی مشتق از خونبند ناف و FBS استفاده شد. تعیین مقدار مناسب و مؤثر بر تکثیر و درصد بقاء سلولی توسط شمارش سلولی با تریپانبلو در زمانهای متفاوت ۲۴، ۴۸ و ۷۲ ساعت بررسی شد. همچنین برای تعیین مقدار مناسب برای مهاجرت سلولی از تکنیک Scarch assay استفاده شد. سپس اثر عصاره پلاکتی با غلظتهای متفاوت بر بیان ژنهای smad2-smad3 در سلولهای فیبروبلاست توسط تست Real Time -PCR موردبررسی قرار گرفت. در مرحله آخر جهت بررسی اثر عصارهی پلاکتی بر مسیر سیگنالینگ Smad، مقدار بیان پروتئینهای Smad2-Smad3-Psmad2-Psmad3توسط تکنیک وسترن بلات ارزیابی شد.
نتایج:
در بررسی تکثیر و درصد بقاء و مهاجرت سلولهای فیبروبلاست در اثر تیمار با عصاره پلاکتی بالاترین غلظت مؤثر مربوط به دز ۱۰% نشان داده شد و نتایج حاصل از این مطالعه نشان داد که افزایش غلظت عصاره پلاکتی، اثر افزایشی بر تکثیر و درصد بقاء سلولهای فیبروبلاست
ندارد. همچنین عصاره پلاکتی در دز ۱۰% سبب افزایش سرعت مهاجرت سلولهای فیبروبلاست میشود. در نتایج حاصل از تکنیک Real time اثر عصاره پلاکتی در غلظت ۱۰% با افزایش بیان ژنهای
Smad2-Smad3 نسبت به گروههای کنترل منفی و مثبت با تفاوت معناداری نشان داده شد. در بررسیهای صورت گرفته در سنجش اثر عصاره پلاکتی در غلظتهای مختلف ۸%، ۱۰% و گروه UCB-PL/FBS و گروه کنترل مثبت و منفی بر بیان پروتئینهای Smad2-Smad3-Psmad2-Psmad3 بهواسطه تکنیک وسترن بلات نشان داد که تمامی گروهها تفاوت معناداری نسبت به گروه کنترل منفی دارند. پروتئینهای Psmad2-Psmad3 که پروتئینهای فرم فعالشده Smad2-Smad3 هستند تنها در گروه کنترل منفی دیده نشدند بلکه در تمامی گروههایی که داری عصاره پلاکتی بودند این پروتئینها فعال شدند.
نتیجهگیری
یکی از مهمترین سلولهای دخیل در امر ترمیم زخم، فیبروبلاستها میباشند، که با تکثیر و مهاجرت سلولی و به راه انداختن مسیرهای سیگنالینگ درونسلولی مربوط به ترمیم زخم در پیشبرد فرایند ترمیم نقش کلیدی بر عهدهدارند. در این مطالعه با نشان دادن اثر عصاره پلاکتی بر اعمال مهم و ضروری سلولهای فیبروبلاست در فرایند ترمیم زخم میتوان نتیجه گرفت که فرآورده عصاره پلاکتی مشتق از خونبند ناف میتواند نقش بسزایی در افزایش ترمیم زخمها داشته باشد.
گستردگیو تنوع کاربردهای بیوتکنولوژی، تعریف و توصیف آنرا کمی مشکل و نیز متنوع ساخته است. برخی آنرا مترادف میکروبیولوژی صنعتی و استفاده از میکروارگانیسمها و برخی آنرا معادل مهندسی ژنتیک تعریف میکنند. در صنعت نیز آدمی با استفاده از علم بیوتکنولوژی و نقش ارگانیسمها به عنوان کاتالیست از میکروارگانیسمها استفاده کرده است. در واقع میکروبیولوژی صنعتی، واژهای قدیمی است که در مورد استفاده میکروارگانیسمها در صنعت بیان شده است و امروزه آن را به تکنولوژی میکروبی [1]تغییر دادهاند.
امروزه با مطالعات فراوانی که دانشمندان در عرصههای مختلف انجام دادهاند، میتوان بیاغراق ادعا کرد که استفاده از میکروارگانیسمها انقلاب عظیمی در همه ابعاد زندگی انسان به وجود آوردهاست. بشر با شناخت میکروارگانیسمها از گذشته تا کنون هم توانسته فعالیت های نامناسب آنها را بر زندگی انسان کنترل کند در واقع از آنها بر علیه خودشان استفاده کند و هم از آنها در زمینههای گوناگون بهره ببرد.
در حال حاضر شاهد کاربرد میکروارگانیسمها در تولید انواع محصولات دارویی از جمله آنتیبیوتیکها هستیم. از دیگر مواد حاصل از متابولیت آنها برای مصارف پزشکی و افزودنیهای غذایی نظیر الکلها، ویتامینها، آنزیمها و … بهره میبریم. همچنین در صنعت شاهد نقش موثر این موجودات ریز در زمینههای مختلف هستیم.
به طور کلی میتوانیم بگوییم که فواید این موجودات ریز بیشتر از مضرات آنها است و به همین سبب این موجودات نقش بسیار مهمی در صنعت برای تولید صنایع گوناگون، در تهیهی موادغذایی مثل ماست، پنیرهای قارچی و خیارشور و …، در تولید فرآوردههای دارویی از جمله آنتیبیوتیکها را ایفا میکنند. در واقع تولید فرآوردههای دارویی مهمترین فایدهی آنها است زیرا با این کار در واقع جان بسیاری از انسانها را در عصرهای گوناگون نجات میدهند و این شاید مهمترین و ارزندهترین فعالیتی باشد که هر موجود جاندار چه کوچک و چه بزرگ در روی این زمین خاکی بتواند انجام دهد.
میکروبشناسی صنعتی به بررسی این میکروارگانیسمها پرداخته و سعی در شناسایی انواع جدید و تولید موتانتهای میکروبی با کارایی و میزان محصول بیشتر و هزینه کمتر دارد.
میکروبشناسی صنعتی امروزه وسیعترین زمینه پژوهشهای میکروبشناختی را تشکیل میدهد و بیشترین هزینه و امکانات را در زیستشناسی به خود اختصاص داده است.
ﺑﺮ اﺳﺎس آﻣﺎرﻧﺎﻣﻪ داروﻳﻲ ﻛﻪ ﻫﺮ ﺳﺎﻟﻪ ﺗﻮﺳﻂ وزارت ﺑﻬﺪاﺷﺖ ﺗﻬﻴﻪ ﻣﻲﮔﺮدد، ﺑﻴﺸﺘﺮﻳﻦ ﻣﺼﺮف دارو دراﻳﺮان ﻣﺮﺑﻮط ﺑﻪداروﻫﺎی آﻧﺘﻲﺑﻴﻮﺗﻴﻚ ﻣﻲﺑﺎﺷﺪ. اریترومایسین ، یکی از انواع ﭘﺮﻣﺼﺮف آنتیبیوتیکها است. در ﺳﺎﻟﻬﺎی اﺧﻴﺮ ﺗﻼﺷﻬﺎی ﺑﺴﻴﺎری در ﺟﻬﺖ ﺧﻮدﻛﻔﺎﻳﻲ و ﺑﻪ ﻣﻨﻈﻮر ﺑﺮﻃﺮف ﻛﺮدن واﺑﺴﺘﮕﻲ ﻛﺸﻮر در زﻣﻴﻨﻪﻫﺎی ﻣﺨﺘﻠﻒ ﺻﻨﻌﺘﻲ اﻧﺠﺎم ﺷﺪه ﻛﻪ در اﻳﻦ ﻣﻴﺎن ﺻﻨﺎﻳﻊ داروﻳﻲ از اﻫﻤﻴﺖ وﻳﮋه ای ﺑﺮﺧﻮردار اﺳﺖ. ﺑﻪ دﻟﻴﻞ رﺷﺪ ﻓﺰاﻳﻨﺪه ﺟﻤﻌﻴﺖ و ﻧﻴﺎز ﻛﺸﻮر ﺑﻪ دارو، ﺑﻪ ﻣﻨﻈﻮر ﺳﻬﻮﻟﺖ ﺗﻬﻴﻪ دارو ﺑﺎ ﻫﺰﻳﻨﻪ ﻛﻤﺘﺮ ﺑﺮای ﺑﻴﻤﺎران، پژوهشهای زیادی صورت گرفته است.
علم بیوتکنولوژی در رشتههای مختلف علمی باعث ایجاد نوآوری و پیشرفتهای چشمگیر شده است. تلاش و کوشش ما بر این بوده است که کاربرد این علم را در فرآیندهای تولید آنتیبیوتیک مورد بررسی قرار دهیم.
یک گلیکوپروتئین گذرنده از غشا از خانواده(ALCAM )مولکول چسبنده لکوسیت فعال شده
ایمنوگلوبولین[1] هاست که دارای یک دومین خارج سلولی با 500 امینو اسید ، یک دومین گذرنده از غشا به طول 22 امینو اسید و هم چنین یک دومین کوتاه سیتوپلاسمی به طول 34 امینو اسید می باشد.(اولریچ وایدله و همکاران[2]،2010؛ مایکل بوون و همکاران[3] ،2010 ؛توماس برورنر و )و از 163q13.1q13.2همکاران[4]،2012) ژن انسانی این پروتئین بروی کروزوم 3 قرار دارد(
200 تشکیل شده است همچنین وزن موکلولی ان 105 کیلو Kb اگزون[5] و اندازه ایی بیش از
دالتون می باشد(اولریچ وایدله و همکاران ،2010) این پروتئین شامل پنج دومین خارج سلولی می باشد .(سالمون اوفوری و جودی کینگ[6]،2008C2[7]و سه نوع V[8] ایمنو گلوبولین دو نوع
مابکل بوون واروفوو[9]،1999)
گیادو اسوارت[10]،2002))ALCAM شکل1- 1 نمای شماتیک از ساختار پروتئین
این پروتئین در تعامل سلول- سلول از نوع هموفیلیک و هتروفیلیک نقش دارد.در نوع هموفیلیک واکنش می دهد.(اولریچ CD6) و در تعامل هتروفیلیک با ALCAM-ALCAM با خودش (
وایدله و همکاران،2010؛ اریک اندرسون و همکاران[11]،2011؛کاترینا فانالی و همکاران[12] ،2014) این پروتئین هم چنین در مهاجرت سلولی نقش ایفا می کند.(جودی کینگک و همکاران [13]،2004 )
به طول110 امینواسیدV2 به طول 93 امینو اسید و هم چنین V1شامل دو قسمت V ناحیه
می باشد هم چنین یک ناحیه کوچک به طول 4 امینو اسید این دو ناحیه را به هم متصل می کند..
را برای هر دونوع تعامل هموفیلیک و Vمطالعات تهیه نقشه عملکردی دومین ها حضور دومین
هتروفیلیک ضروری دانست.(مایکل بوون و همکاران[14]،1996)
چندین روش مبتنی بر روش های ژنومیک[15] و پروتئومیکس[16] این پروتئین را به عنوان یک هدف مرتبط با سرطان معرفی کرده اند.این پروتئین هم چنین توسط چندین گروه به عنوان انتی ژن سطحی سلول های بنیادی سرطان کولورکتال شناسایی شده است.(اولریچ وایدله وهمکاران ،2010 ) انتی ژن ها مارکر های سطح سلولی اند و می توانند برای شناسایی گروه های سلولی که تشکیل دهنده یک ارگان هستند مورد استفاده قرار گیرند.این مارکرها را می توان جهت پیش بینی پاسخ به درمان ،مرتب سازی سلول های بنیادی سرطان، درمان سرطان و مرتب سازی رده های سلولی مورد استفاده قرار داد.(الوین لیو و همکاران[17]، 2004)
این پروتئین نقش مهمی در تهاجم و پیشرفت تومو در سرطان کولورکتال دارد(جیایی وانگ و همکاران[18]،2011)
در بافت توموری انسان(مرته تونه ویجر و همکاران[19]،2010)ALCAM شکل1- 2 رنگ امیزی ایمنوهیستوشیمیایی
درطول شکل گیری ضایعات توده ، سلول های سرطانی باید به یکدیگر متصل شوند بنابراین از مولکول های چسبنده برای اینکه با هم بمانند استفاده می کنند.تومور می تواند از طریق افزایش حجم خود به ساختارهای مجاور به طور مستقیم هجوم برده و یا اینکه می توانند سایت های دور متاستاز شوند.متاستاز هنگامی رخ می دهد سلول ها از تومور اولیه جدا شده و محیط خودشان را ترک کرده ، به رگ های خونی یا لمفاتیک حمله کرده و به مکان های دور مهاجرت کنند.با توجه در چسبندگی سلول ها می توان نقش مهمی را برای این پروتئین در ایجاد ALCAM به اهمیت
متاستاز در سرطان کولورکتال قائل بود(سالمون اوفوری و جودی کینگ[20]،2008)
1-14: اهداف پژوهش…. 36
فصل دوم: مروری بر متون گذشته
2-1: مطالعات انجام شده در ایران. 38
2-2: مطالعات انجام شده در خارج از ایران. 39
فصل سوم: مواد و روش ها
3-1: محیط های کشت… 43
3-1-1: محیط کشت شکلات آگار. 43
3-1-1-1: مواد و تجهیزات مورد نیاز. 43
3-1-1-2: روش تهیه 1000 میلی لیتر محیط کشت شکلات آگار. 43
3-1-2: محیط کشت آگار خون دار. 44
3-1-2-1: روش تهیه 1000 میلی لیتر محیط کشت شکلات آگار. 44
3-1-3: محیط کشت BHI+ supplement مایع.. 44
3-1-3-1: مواد و دستگاه های مورد نیاز. 44
3-1-3-2: روش تهیه 500 میلی لیتر محیط کشت BHI+ supplemenمایع.. 44
3-2: کشت نمونه ها 45
3-3: فریز کردن باکتری.. 45
3-3-1: مواد و تجهیزات لازم. 45
3-3-2: روش فریز کردن. 45
3-4: شناسایی عمومی هموفیلوس آنفلونزا 46
3-4-1: تست نیاز های غذایی.. 46
3-4-2: رنگ آمیزی گرم. 46
3-4-2-1: مواد و تجهیزات لازم. 46
3-4-2-2: روش رنگ آمیزی گرم. 46
3-5: واکنش زنجیره ای پلیمراز (PCR). 47
3-5-1: استخراج DNA از باکتری به روش جوشاندن. 47
3-5-1-1: مواد و تجهیزات لازم. 47
3-5-1-2: روش استخراج.. 48
3-5-2: پرایمرها 48
3-5-2-1: آماده سازی پرایمرها 49
3-5-3: برنامه PCR.. 49
3-5-4: تهیه مستر میکس PCR.. 50
3-5-4-1: مواد و تجهیزات لازم. 50
3-5-4-2: روش تهیه مسترمیکس…. 50
3-5-5: تهیه 500 میلی لیتر بافر TAE 10X.. 53
3-5-5-1: مواد و تجهیزات لازم. 53
3-5-5-2: روش تهیه بافر. 53
3-5-6: الکتروفورز محصول PCR.. 53
3-5-6-1: مواد و تجهیزات مورد نیاز. 53
3-5-6-2: تهیه ژل آگارز جهت الکتروفوز. 53
3-5-6-3: روش الکتروفورز محصول PCR.. 54
3-6: استخراج PRP. 54
3-6-1: مواد و تجهیزات مورد نیاز. 54
3-6-2: تهیه ml50 محلول CTAB 0.5 M… 54
3-6-3: تهیه ml 50 محلول NaCl 0.4 M… 55
3-6-4: روش استخراج PRP. 55
3-7: اندازه گیری PRP به روش بیال. 56
3-7-1: مواد و تجهیزات لازم. 56
3-7-2: روش اندازه گیری PRP. 56
3-8:تعیین تعداد کپی cap با استفاده از Real-time PCR: 57
3-8-1: مواد و تجهیزات لازم: 57
3-8-2: شرایط واکنش: 57
3-8-3: کمیت سنجی مطلق(Absolute quantification): 59
3-8-3-1: انجام و تخلیص محصول PCR برای منحنی استاندارد. 59
3-8-3-2: تهیه منحنی استاندارد. 60
3-8-4: کمیت سنجی نسبی (Relative Quantification): 62
3-9: تعیین ژنوتیپ نمونه ها با استفاده از PCR : 62
فصل چهارم: نتایج
4-1: نتایج روش های تشخیص عمومی.. 65
4-1-1: نتایج نیاز غذایی.. 65
4-1-2: نتایج رنگ آمیزی گرم. 65
4-2: نتایج آزمون PCR.. 66
4-2-1: تایید هموفیلوس آنفلونزای کپسول دار بودن نمونه ها 66
4-2-2: تایید تیپ b بودن نمونه ها 68
4-2-3: نتیجه نهایی PCR.. 69
4-2-4: مشاهده سوش جهش یافته Hib‾ در میان نمونه ها 72
4-3: نتایج سنجش PRP به روش بیال. 72
4-4: نتایج Real-time PCR.. 73
4-4-1: کمیت سنجی نسبی: 74
4-4-2: کمیت سنجی مطلق: 77
4-5: نتایج تعیین ژنوتیپ: 82
فصل پنجم: بحث و نتیجه گیری
5-1: بحث و نتیجه گیری.. 84
5-3: پیشنهادات… 87
منابع … 89
خلاصه انگلیسی.. 98
فهرست جداول
جدول 1-1: نیاز گونه های مختلف هموفیلوس به فاکتورهای مختلف به فاکتورهای X و V 7
جدول 1-2: بیوتایپ های هموفیلوس آنفلونزا 8
جدول 3-1: لیست پرایمرها برای تایید Hib.. 48
جدول 3-2: برنامه PCR.. 50
جدول 3-3: مواد PCR.. 52
جدول3-4: پرایمرهای اولیگونوکلئوتیدی استفاده شده برای Real time PCR.. 58
جدول3-5: مواد واکنش برای Real-time PCR.. 61
جدول3-6 : برنامه واکنش Real-time PCR.. 61
جدول 3-7: پرایمر های مورد استفاده برای تعیین ژنوتیپ نمونه های منتخب… 63
جدول 3-8: برنامه دمایی واکنش PCR برای پرایمرهای K و L.. 63
جدول 4-1: لیست نمونه ها و نتایج PCR.. 70
جدول 4-2: میزان PRP نمونه های هموفیلوس آنفلونزا تیپ b.. 73
جدول 4-3 : نمونه های منتخب و میزان PRP. 74
جدول4-4: کمیت سنجی نسبی ژن rpoB و قطعه IS106 توسط Real-time PCR.. 75
جدول4-5: کمیت سنجی نسبی ژن rpoB و ژن capb توسط Real-time PCR.. 75
جدول4-6: نتایج مربوط به منحنی استاندارد جایگاه rpoB.. 78
جدول 4-7: نتایج مربوط به منحنی استاندارد جایگاه capB.. 78
جدول 4-8: نتایج مربوط به منحنی استاندارد جایگاه IS1016. 78
جدول4-9: نتایج کمیت سنجی مطلق (تعداد کپی) جایگاه های rpoB, IS1016 و capB 79
جدول 4-10 : تعداد کپی جایگاه های capb و IS1016 نسبت به جایگاه تک کپی rpoB 80
فهرست تصاویر
شکل1-1: انتشار باسیل های گرم منفی، هموفیلوس و سایر باکتریهای نرمال و سخت رشد. 5
شکل 1-2: تست نوارهای X ، V و XV.. 7
شکل 1-3: ساختار پلی ساکارید های کپسولی هموفیلوس آنفلونزا (تیپ های a-f). 10
شکل 1-4: تظاهرات کلینیکی بیماریهای با عامل Hib بصورت درصد. 14
شکل 1-5: کشورهایی که از سال 1997 تا 2012 به برنامه واکسیناسیون علیه Hib پیوستن 18
شکل 1-6: نقشه ژنتیکی حلقوی Haemophilus influenza Rd.. 20
شکل 1-7: ساختار ژنتیکی جایگاه cap در هموفیلوس آنفلونزا سروتایپ های a,b,c,d,e,f. 21
شکل 1-8: جایگاه cap و ژن های تشکیل دهنده 24
شکل 1-9 : درخت تکاملی سویه های کپسول دار هموفیلوس آنفلونزا 26
شکل1-10 : تفاوت های بین ژنوتیپ I و II در جایگاه cap. 28
شکل 1-11: نحوه اتصال نشانگر سایبرگرین.. 30
شکل1-12: مکانیسم عمل SYBR Green به عنوان عامل متصل شونده به DNA.. 31
شکل1-13: رسم منحنی استاندارد. 33
شکل 3-1: ویال های آماده برای PCR روی یخ.. 52
شکل 4-1: رشد باکتری در حضور دیسک XV و عدم رشد در حضور دیسک X و V.. 65
شکل 4-2: رنگ آمیزی گرم نمونه ها نشان دهنده کوکوباسیل های گرم منفی.. 66
شکل 4-3: نتایج PCR برای ست پرایمر A و B 67
شکل 4-4: نتایج PCR برای ست پرایمر C و D.. 69
شکل 4-5: مدل های پیشنهادی برای جایگاه capb در نمونه های انتخاب شده 81
شکل4-6: نتایج PCR تعیین ژنوتیپ نمونه ها 82
فهرست نمودارها
نمودار 4-1: بیان نسبی capb نسبت به ژن مرجع rpoB…………………………………………………… 76
نمودار 4-2: بیان نسبی IS1016 نسبت به ژن مرجع rpoB………………………………………………….. 76
نمودار 4-3: تعداد کپی در دو جایگاه capB و IS1016 نسبت به جایگاه rpoB در نمونه ها……… 80
خلاصه فارسی
هموفیلوس آنفلونزای تیپب (Hib) از مهمترین عوامل ایجاد مننژیت باکتریال در نوزادان و کودکان میباشد. مهمترین عامل بیماریزایی این باکتری کپسول پلیساکاریدی از جنس PRP میباشد که تولید آن تحت کنترل گروهی از ژنها میباشد که در جایگاهی به نام capb قرار دارند. واکسیناسیون علیه این بیماری در بیشتر کشورهای جهان انجام شده ولی ایران هنوز به طرح واکسیناسیون سراسری نپیوسته است، به همین دلیل تولید واکسن بومی هموفیلوس آنفولانزا یک ضرورت محسوب میشود. هدف از این مطالعه آنالیز مولکولی ژنوم باکتری برای انتخاب یک سویه بومی واکسینال میباشد. در این تحقیق ابتدا نمونههای مشکوک به روش PCR و با استفاده از 4 جفت پرایمر اختصاصی شناسایی شد، میزان PRP نمونهها به روش بیال اندازهگیری شد، سپس تعداد کپی جایگاه cap در نمونههای منتخب به روش Real Time PCR و با استفاده از 3 جفت پرایمر طراحی شده برای مناطق IS1016، capb و ژن تککپی rpoB با متد Abslute Quantification مشخص شد. در نهایت ژنوتیپ نمونههای منتخب با استفاده از دو جفت پرایمر اختصاصی مشخص شد.از میان 30 نمونه 18 مورد Hib ،11 مورد غیر از هموفیلوس آنفلونزا و یک مورد Hib‾ تشخیص داده شد. از میان 5 نمونه منتخب دو نمونه دارای 3 کپی از جایگاه cap بوده و 3 نمونه دارای دو کپی از این جایگاه تشخیص داده شدند. در مرحله آخر تمام 5 نمونه ژنوتیپ I تشخیص داده شدند. در این مطالعه برای اولین بار در ایران تعیین تعداد کپی و ساختار ژنوم جایگاه cap در سویههای بومی انجام شد.
کلمات کلیدی: هموفیلوس آنفلونزا، Real time PCR، مننژیت ، Hib
فصل اول
کلیات
1-1: تاریخچه
هموفیلوس آنفلونزا برای اولین بار در سال 1892 به وسیله فایفر جدا گردید و تا اوایل دهه 1930، اکثر دانشمندان آن را عامل مولد آنفلونزای اپیدمیک می دانستند. زیرا عموماً همراه با این بیماری بدست می آمد(8). در سال 1933 مسلم گرید که عامل بیماری آنفلونزا ویروس است و این باکتری یک مهاجم ثانوی در اپیدمیها می باشد(1). البته در پاندمی های اخیری که ویروس آنفلونزا عامل آن بوده، نقش نزدیک از این باکتری با ویروس آنفلونزا دیده نشده است و بدین دلیل مسئله سینرژیسمی بین ویروس و باکتری در بیماری های انسانی ناشناخته به نظر می رسد. بنابر این نام آنفلونزا اهمیت اتیولوژیک ندارد(8). آنفلونزا معمولا منصوب به عنوان ” flu”، یک بیماری ویروسی است که بوسیله التهاب حاد مسیر هوایی ناحیه فوقانی دستگاه تنفسی مشخص می گردد. علائم، اغلب با التهاب شدید غشاء مخاط بینی، سردرد، برونشیت و درد عضلانی عمومی شدید[1] پیشرفت می کند(48).
کاملترین مطالعات توسط مارگارت پیتمن بین سالهای 1930 تا 1940 صورت گرفت ، او فیزیولوژی، بیماریزایی، مصونیت، اپیدمیولوژی و خصوصیات این باکتری را به صورت کامل شرح داد(1). نام جنس هموفیلوس از دو ریشه یونانی هم [2]به معنای خون و فیلوس [3]به معنای دوست داشتن گرفته شده است(20) . بر اساس کتاب باکتریولوژی برِگِی[4]، 10 گونه از هموفیلوسها در ارتباط با انسانها نام گذاری شده اند که یکی از آنها گونه آنفلونزا می باشد. بعلاوه 6 گونه نیز در ارتباط با حیوانات بوده و 3 گونه نیز حالت نامشخص دارند.
طیور، کارآمدترین راه تبدیل محصولات فرعی و ضایعات کشاورزی به گوشت و تخممرغ برای مصرف انسان میباشد. بنابراین پرورش طیور و افزایش تولیدات آنها یکی از مهمترین و عملیترین راههای تأمین پروتئین حیوانی در کشور ما است. پرورش طیور صنعتی توسعه یافته میباشد، بهطوریکه قادر است غذای قابل مصرف بیشتر و با هزینهی کمتر، برای جمعیت کشور فراهم سازد(39).کشور ایران هفتمین کشور تولیدکننده مرغ جهان با تولید 2 میلیون تن مرغ آماده طبخ در سال1392 بوده است(19). استان فارس چهارمین استان تولیدکننده مرغ گوشتی با سهم 5/7 درصدی بهشمار میآید و پیش بینی میشود به استان دوم کشور در سال 1393 تبدیل شود(5). گوشت مرغ مهمترین منبع تأمین کننده پروتئین حیوانی مردم کشور با مصرف سرانه 25 کیلوگرم در سال، محسوب میشود(5). سند امنیت غذایی کشور و چشمانداز توسعه صنعت مرغداری کشور، نشاندهندهی افزایش تولید و مصرف این محصول در سالهای آتی است(34). با پیشرفتهایی که در این زمینه به وجود آمده، این صنعت روز به روز از اهمیت بیشتری برخوردار شده و توجه مسئولین تغذیه را بهخود جلب کرده است تا جهت تولید سریعتر و بیشتر پروتئین، شیوههای متنوع و مختلفی را در رابطه با ضریب تبدیل غذایی به گوشت در طیور ارائه دهند(38). در سالهای اخیر سرعت رشد جوجههای گوشتی به دلیل پیشرفتهای موجود در زمینه تغذیه و ژنتیک افزایش یافته است(149). امروزه از مواد افزودنی خوراکی ضدمیکروبی، بطور گسترده در پرورش حیوانات مزرعهای، برای افزایش بهرهوری و فراهم نمودن شرایط اکولوژیکی مناسب سیستم گوارشی بهمنظور افزایش سرعت رشد، کاهش ریسک در برابر خطر بیماریها، استفاده میشود(209). افزایش توجه به توسعه مقاومت آنتیبیوتیکی در باکتریها و احتمال وجود بقایای آنتیبیوتیکی در فرآوردههای طیور و همچنین ایجاد سمیت کبدی ناشی از مصرف آنتیبیوتیکها در دوز بالا، تلاش محققان برای یافتن راههای دیگری غیر از استفاده از آنتیبیوتیکها در جیرهی غذایی طیور را سبب شده است(51).
با توجه به مشکلات استفاده از آنتیبیوتیکها در تغذیه جوجههای گوشتی، نظر محققان به سمت مواد افزودنی دیگری به عنوان جانشین آنتیبیوتیکها در غذای طیور معطوف شد، که این مواد افزودنی باعث سلامتی و بهبود میکرو فلور دستگاه گوارش طیور شوند(102).
از این رو محققین، ترکیبات گیاهی مختلفی را به عنوان جایگزین آنتیبیوتیکها در مواد تولیدی حیوانی مورد مطالعه قرار دادهاند؛ که باعث بهبود سیستم ایمنی و عملکرد ارگانهای مهم بدن مانند کبد شده و نهایتاٌ سبب افزایش در عملکرد تولیدی آنها نیز شده است(149). گیاهان دارویی و فرآوردههای آنها از جملهی این افزودنیهای طبیعی هستند که میتوان از آنها به عنوان آنتیبیوتیکهای طبیعی استفاده کرد(11) گیاهان دارویی به عنوان افزودنیهای خوراکی طبیعی؛ اخیراً در جیره غذایی طیور جهت بهبود عملکرد و افزایش پاسخهای ایمنی پرندگان به جای آنتی بیوتیکها مطرح شده است(69و71).
تمایل به استفاده از گیاهان دارویی در تغذیه دام و طیور را میتوان به صورت افزایش معنیدار مقالات علمی چاپ شده از سال 2000 به بعد مشاهده کرد(175). عامل اصلی این رخداد، شروع ممنوعیت استفاده از آنتیبیوتیکها در اتحادیه اروپا از سال 1999 و قطع کامل آن در سال 2006 بوده است(163). گیاهان دارویی و فرآوردههای آنها، یکی از جایگزینهای مطرح آنتیبیوتیکها هستند که در سالهای اخیر به خاطر ممنوعیت استفاده از آنتیبیوتیکها، مورد توجه قرار گرفتهاند(188).
گیاهان دارویی و فرآوردههای آنها به دلیل عواملی چون؛ ارزش بالای اقتصادی و کمهزینه بودن تولید آنها، نداشتن اثرات تخریبی بر محیط زیست، ارگانیک بودن این داروها، کم بودن عوارض جانبی در مقایسه با داروهای شیمیایی، کاهش ایجاد مقاومت نسبی عوامل بیماریزا، انحصاری بودن درمان برخی بیماریها با گیاهان دارویی و وجود تجربیات مختلف بالینی، باعث شده است تا این منابع دارویی در سالهای اخیر
از ارزش و جایگاه خاصی در پرورش، تولید و درمان دام و طیور برخوردار باشند(30). همچنین استفاده از پروبیوتیک، پریبیوتیک و ترکیبات طبیعی به عنوان جانشین آنتی بیوتیکها مد نظر قرار گرفته است؛ که برخلاف آنتیبیوتیکها، این ترکیبات طبیعی، اثرات جانبی بسیار کمی داشته و مطمئنتر هستند(195).
تحقیقات نشان میدهد که بهبود در وزن و سن ارائه به بازار سویههای امروزی جوجههای گوشتی، بیشتر ناشی از افزایش شدت انتخاب برای رشد بالاتر میباشد(177). بهگزینی ژنتیکی، نقش موثری در بهبود سرعت رشد و افزایش وزن جوجههای گوشتی ایفا کرده است(114). با افزایش شدت انتخاب، میزان اشتهای جوجههای گوشتی کنونی، افزایش معنیداری داشته و نمیتوانند بطور بهینه، مصرف اختیاری را مطابق با انرژی مورد نیاز طیور، تنظیم کنند و زمانی که بطور آزاد به خوراک دسترسی داشته باشند؛ حالت پرخوری، نشان داده و بیش از 2 تا 3 برابر نیاز نگهداری و رشد، غذا مصرف میکنند(46). بهاین دلیل است که؛ افزایش شدت انتخاب برای رشد بالاتر همراه با تغذیه کامل، بروز مشکلاتی مانند افزایش بافت ذخیره چربی ؛ به سطحی بالاتر از نیاز فیزیولوژیک(139)، افزایش اختلالات سیستمهای قلبی و عروقی، افزایش نرخ متابولیکی، اختلالات اسکلتی، حساسیت بالاتر به بیماریهای متابولیکی مانند سندرم مرگ ناگهانی(210)، آسیت(177)، کاهش ایمنی و مقاومت در برابر بیماریها؛ که در نهایت امر، منجر به افزایش مرگ و میر و تلفات میگردد(104).
امروزه با توجه به بالا رفتن میزان تولید و مصرف گوشت مرغ، توجه بیشتری به سلامت محصولات طیور میشود. مصرف آنتیبیوتیكها باعث ظهور مقاومت آنتیبیوتیكی شده و عوارض جبران ناپذیری برجای میگذارند. از مهم ترین جانشینهای آنتیبیوتیكهای محرك رشد در صنعت طیور می توان به گیاهان دارویی اشاره كرد(132). گیاهان دارویی علاوه بر اثرات ضدمیكروبی، اثرات مفیدی؛ از جمله: كاهش لیپیدهای سرمی و بهبود دیگر فاكتورهای خونی از جمله آنزیمهای کبدی دارند(12).
در طی سالیان اخیر و به دلیل محدودیت استفاده از آنتیبیوتیکها به عنوان افزودنی غذایی در تغذیه دام و طیور و حتی ممنوعیت مصرف، به کارگیری افزودنیهایی مانند فیتوبیوتیکها[1]، پروبیوتیکها[2] و به عنوان ترکیبات جایگزین آنتیبیوتیکها، مورد توجه صنعت دامپروری و به ویژه صنعت پرورش طیور قرار گرفته است. نتایج حاصل از انجام برخی مطالعات به عمل آمده در ایران نیز نشاندهنده امکان استفاده ازاین افزودنیها در تغذیه طیور به منظور افزایش بازدهی تولید آنها میباشد(44). پروبیوتیکها، ترکیبات میکروبی زندهای هستند که مستقیماً به جیره دام و طیور اضافه میشوند و تاثیر بسیار مطلوبی بر عملکرد و سلامت این حیوانات دارند. در سالهای اخیر پروبیوتیکها به خاطر عدم ماندگاری در لاشه و تأثیرات مفید بر خصوصیات تولیدی طیور جایگاه ویژهای را به خود اختصاص دادند(89). از مهمترین ترکیبهای جایگزین آنتی بیوتیکها، گیاهان دارویی و عصارههای آنها میباشد. گیاهان دارویی علاوه بر اثرات ضدمیكروبی، فواید دیگری نیز دارند. این اثرات مفید شامل اثرات كاهش لیپیدهای سرمی و بهبود دیگر فاكتورهای خونی است(2). افزودنیهای خوراکی فیتوژنیک[3] به عنوان مواد مشتق شده از گیاهان تعریف میشوند که با بهبود ویژگیهای جیره، افزایش تولید حیوان و بالا بردن کیفیت محصولات حیوانی به جیره افزوده میشوند(77). شکی وجود ندارد که جیرههای غذایی سرشار از اسیدهای چرب اشباع، برای انسان زیان آور است و موجب تشدید بیماری تصلب شرائین در افراد میگردد و این امر در کشورهای پیشرفته که دارای منابع غذایی بسیار متنوع هستند باعث نگرانیهایی شده است. بحث حاضر مربوط به ترکیبات فیتوژنیک میباشد که اخیراً از آنها به عنوان افزودنیهای محرک رشد در تغذیه دام و طیور استفاده شده است. از جمله مزایای استفاده از گیاهان دارویی میتوان به ساده بودن کاربرد و نداشتن اثرات سوء در اکثر آنها بر عملکرد حیوانات و نیز باقی